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Sobre Nosotros

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El enfoque del Grupo de Trabajo en Ingeniería de Tejidos (GTIT) de la Universidad Nacional de Colombia ha sido desarrollar productos elaborados con proteínas de la familia del colágeno que estimulen la regeneración de tejidos dañados o perdidos. En el marco de sus actividades académicas y científicas, ha llevado a cabo proyectos de investigación y desarrollo financiados por el Ministerio de Ciencia, Tecnología e Innovación de Colombia, el Banco de la República y la Universidad Nacional de Colombia.

Como resultado se ha formado recurso humano a nivel de pregrado, maestría y doctorado y se han desarrollado activos de conocimiento científico-tecnológicos, entre los que se encuentran productos de propiedad intelectual y “know how” base de tecnologías que permiten producir sustitutos de tejido elaborados con proteínas de la familia del colágeno. Estos productos buscan contribuir a mejorar el proceso de cierre de heridas de la piel y otros tejidos conectivos.

Generar espacios de discusión académica con grupos colombianos o extranjeros que trabajen en nuestras áreas de interés; difundir nuestros resultados a través de artículos en revistas indexadas y conferencias y la participación en docencia de cursos y dirección de trabajos de grado (pre y postgrado) de estudiantes de las Facultades de Ciencias, Medicina, Odontología e Ingeniería de la UNAL. Las actividades investigación y de formación del grupo han sido financiadas por Colciencias, la División de Investigaciones de la Sede Bogotá de la Universidad Nacional de Colombia, el Banco de la República y la Red Cyted “RIMADEL”.


Los proyectos de investigación llevados a cabo por GTIT han vinculado estudiantes de maestría y doctorado, permitiendo la formación de recurso calificado. En el grupo se han formado 10 estudiantes de doctorado, 22 estudiantes de maestría y 21 estudiantes de pregrado.

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Se han realizado trabajos que han ganado los siguientes premios: XI Premio Aventis-Academia Nacional de Medicina al mejor proyecto de investigación en el área biomédica (2000); Mejor investigación Odontológica XIV Encuentro Nacional y III Latinoamericano de Investigación Odontológica (2003); Mención Honorífica al Mejor Trabajo de Investigación en Ciencias Básicas en el XIV Premio Aventis-Academia Nacional de Medicina (2003), Mejor Trabajo de Investigación Odontológica Premio Rafael Torres Pinzón de la Federación Odontológica Colombiana (2004). Los resultados de investigación han sido la base para la obtención de cinco patentes de invención y la solicitud de otras dos patentes que se encuentran en revisión en la Superintendencia de Industria y Comercio. Igualmente, la creación de Regencol SAS la cual, está en el proceso de ser aceptada como spin-off de la UNAL y la obtención de un registro sanitario para un dispositivo medico a base de colageno I, en el marco de la convocatoria 642 “Locomotora de la Innovación” de Colciencias (hoy MinCiencias).

Patentes de Invención del GTIT

  • Martha Raquel Fontanilla Duque, Diana Milena Millán Cortes, Ronald Andrés Jiménez Cruz. Desarrollo de conductos bifásicos laminares de colágeno tipo I para usar en regeneración de nervio periférico. Superintendencia de Industria y Comercio. Resolución 1579. Validez: 18/06/2020- 18/06/2040. Fecha de Expedición: 27/03/2025.

  • Martha Raquel Fontanilla Duque, Edward Baudilio Suesca Quintero, María Elisa Soto Herrera, Sergio Alexander Casadiegos Rincón. Procedimiento para el aislamiento y purificación de colágeno II a partir de tráquea bovina. Superintendencia de Industria y Comercio. Resolución 55565. Validez: 25/07/2017 to 25/07/2037. Fecha de Expedición: 30/08/2021.

  • Martha Raquel Fontanilla Duque, Edward Baudilio Suesca Quintero, Ronald Andrés Jiménez Cruz. Procedimiento para la preparación de colágeno tipo I y de soportes unidireccionales y multidireccionales que lo contienen. Superintendencia de Industria y Comercio- Resolución 55951. Validez: 06/11/2012 - 06/11/2034. Fecha de Expedición 15/09/2020.

  • Martha Raquel Fontanilla Duque; Ronald Andrés Jiménez Cruz. Procedimiento para la elaboración de soportes multidireccionales de colágeno tipo I que contienen micropartículas de gelatina-colágeno para la liberación sostenida de moléculas bioactivas. Superintendencia de Industria y Comercio. Resolución 44663. Validez: 05/23/2016 to 05/23/2036. Fecha de Expedición: 09/10/2019.

  • Díaz J.F, Arévalo P.A., Fontanilla M.R., Moreno NC. Bioreeactor para soportes sembrados con fibroblastos. Superintendencia de Industria y Comercio. Resolución 52052, Clasificación IPC: C 12 N 5/00. Validez: 09/11/2007 to 09/11/2017. Fecha de Expedición: 28/09/ 2010.

Artículos Relevantes:

  • Flórez AM., Jiménez R.A., Torres MA., Braga M.E.M., de Sousa Herminio C. Fontanilla M.R. Collagen II and decellularized hyaline cartilage scaffolds derived from bovine trachea differentially promote chondrogenic differentiation of mesenchymal stem cells and decrease secretion of angiogenic factors. Cell and Tissue Research. Accepted for publication

  • González-Duque MI, Flórez AM, Torres MA, Fontanilla MR*. Composite Zonal Scaffolds of Collagen I/II for Meniscus Regeneration. ACS Biomater Sci Eng, 2024, 10(4):2426-2441. Doi:10.1021/acsbiomaterials.3c

  • R.A. Jiménez, D. Millán, A. Sosnik, M.R. Fontanilla*. Aloe vera–eluting collagen I microgels: physicochemical characterization and in vitro biological performance. Materials Today Chemistry, Volume 23, March 2022 https://doi.org/10.1016/j.mtchem.2021.100722

  • Moncayo-Donoso M., Rico-Llanos G.A., Garzón-Alvarado D.A., Becerra J., Visser R*, Fontanilla M.R*. The effect of pore directionality of collagen scaffolds on cell differentiation and in vivo osteogenesis. Polymers 2021, 13, 3187. https://doi.org/10.3390/polym13183187

  • Millán D., Jiménez R.A.., Nieto L.E., Poveda I.Y., Torres M.A., Silva A.S., Ospina L.F., Mano J.F., Fontanilla M.R*. Adjustable conduits for guided peripheral nerve regeneration prepared from bi-zonal unidirectional and multidirectional laminar scaffold of type I collagen. Mater Sci Eng: C February 2021, 111838. https://doi.org/10.1016/j.msec.2020.111838

  • Torres M.A., Gualtero D.F.*, Lafaurie G.I., Fontanilla MR*. Aggegatibacter actinomycetemcomitans induces a proatherosclerotic response in human endothelial cells in a three-dimensional collagen scaffold model. Mol Oral Microbiol. February 2021, 36(1): 58-66. https://doi.org/10.1111/omi.12326

  • González-Duque M.I., Hernández-Martínez J.D., Muñoz-Medina S.E., Fontanilla MR*. Treatment with type-I collagen scaffolds in patients with venous ulcers: Case report. Case Reports. 2020; 6(2): 78-85. https://doi.org/10.15446/cr.v6n2.83815

  • Gualtero DF, Lafaurie GI, Fontanilla MR*. Differential responses of endothelial cells on three-dimensional scaffolds to lipopolysaccharides from periodontopathogens. Mol Oral Microbiol. 2019; 34(5):183-193. doi: 10.1111/omi.12263.

  • Moncayo-Donoso M, Guevara JM, Márquez-Flórez K, Fontanilla MR, Barrera LA, Garzón-Alvarado DA. Morphological changes of physeal cartilage and secondary ossification centres in the developing femur of the house mouse (Mus musculus): A micro-CT based study. Anat Histol Embryol. 2019; 48(2):117-124. doi: 10.1111/ahe.12417. PMID: 30585347

  • Gil-Cifuentes L., Jiménez R., Fontanilla MR*. Evaluation of collagen type I scaffolds including collagen-gelatin microparticles and Aloe vera in a model of full- thickness skin wound. Drug Deliv Transl Res. 2019; 9; 25-36. doi: 10.1007/s13346- 018-00595-x. PMID: 30387049

  • Casadiegos S., Bustos RH., Fontanilla MR*. Comparative evaluation of healing biomarkers in skin wound exudates using a nanobiosensor and histological analysis of full-thickness skin wounds grafted with multi- or unidirectional artificial dermis. J Tissue Eng Regen Med. 2018; 12(12):2299-2308. doi: 10.1002/term.2762.

  • Fontanilla MR*., Casadiegos S., Bustos RH., Patarroyo MA. Comparison of healing of full-thickness skin wounds grafted with multidirectional or unidirectional autologous artificial dermis: differential delivery of healing biomarkers. Drug Deliv Transl Res. 2018; 8(5):1014-1024. doi: 10.1007/s13346-018-0528-2.

  • Gualtero DF*, Lafaurie GI, Fontanilla MR. Two-dimensional and three-dimensional models for studying atherosclerosis pathogenesis induced by periodontopathogenic microorganisms. Mol Oral Microbiol. 2018 Feb; 33(1):29-37. doi: 10.1111/omi.12201. PMID: 28984079 Review.

  • Suesca E; Dias A; Braga, M; Sousa H*; Fontanilla MR*. “Multifactor analysis on the effect of collagen concentration, cross-linking and fiber/pore orientation on chemical, microstructural, mechanical and biological properties of collagen type I scaffolds”. Mater Sci Eng: C. 2017 Aug 1; 77:333-341. doi: 10.1016/j.msec.2017.03.243

  • Flórez-Cabrera A; González-Duque MI., Fontanilla MR*. Cell therapy and tissue engineering product for chondral knee lesions. Rev Colomb Biotecnol. 2017; XIX(2): 29-38. Doi:10.15446/rev.colomb.biote.v19n2. XXXXX

  • Millán, D., Jiménez, R. A., Nieto, L. E., Linero, I., Laverde, M., Fontanilla, M. R*. Preclinical evaluation of collagen type I scaffolds, including gelatin-collagen microparticles and loaded with a hydroglycolic Calendula officinalis extract in a lagomorph model of full-thickness skin wound. Drug Deliv Transl Res. 2016; 6(1):57-66. doi: 10.1007/s13346-015-0265-8.

  • Jimenez R A; Millán D; Suesca E; Sosnik A, Fontanilla MR*. “Controlled Release of an Extract of Calendula officinalis Flowers from a System Based on the Incorporation of Gelatin-Collagen Microparticles into Collagen I Scaffolds”. Drug Deliv Transl Res. 2015; 5(3):209-18. doi: 10.1007/s13346-015-0217-3.

  • Bustos RH, Suesca E, Millán D, González JM, Fontanilla MR*. Real-time quantification of proteins secreted by artificial connective tissue made from uni- or multidirectional collagen I scaffolds and oral mucosa fibroblasts. Anal Chem. 2014; 86(5):2421-8. doi: 10.1021/ac4033164.

  • Moura LI, Dias AM, Suesca E, Casadiegos S, Leal EC, Fontanilla MR, Carvalho L, de Sousa HC, Carvalho E*. Neurotensin-loaded collagen dressings reduce inflammation and improve wound healing in diabetic mice. Biochim Biophys Acta. 2014; 1842(1):32-43. doi: 10.1016/j.bbadis.2013.10.009.

  • Millán D, Chiriboga C, Patarroyo M.A, Fontanilla M.R*. Enterococcus faecalis internalization in human umbilical vein endothelial cells (HUVEC). Microb Pathog. 2013; 57:62-9. doi: 10.1016/j.micpath.2012.11.007

  • Fontanilla MR*, and Espinosa L. In vitro and in vivo assessment of oral autologous artificial connective tissue characteristics that influence its performance as a graft. Tissue Eng Part A. 2012; 18(17-18):1857-66. doi: 10.1089/ten.TEA.2011.0421.

  • Espinosa L, Sosnik A, Fontanilla MR*. Development and preclinical evaluation of acellular collagen scaffolding and autologous artificial connective tissue in the regeneration of oral mucosa wounds. Tissue Eng Part A. 2010, 16 (5), 1667-79. doi: 10.1089/ten.TEA.2008.0571.